內參抗體（Housekeeping Antibodies）是實驗中的“標尺”，用于校正樣本量差異、評估實驗體系穩定性（如Western Blot、免疫組化）。選擇合適的內參抗體是確保數據可靠性的關鍵一步，尤其對高校科研中基因表達、蛋白定量等研究至關重要。
選錯內參 = 實驗白做？
別慌！
這份指南帶你精準避坑！
一、四大黃金原則
01 樣本種屬與組織類型
哺乳動物：β-actin、GAPDH、β-tubulin 是百搭選手，適用全細胞 / 胞漿檢測。
植物樣本：Plant actin 或 Rubisco 更靠譜，避免跨物種干擾。
特殊物種：如酵母、昆蟲，建議查文獻選保守管家基因（如 Histone H3）。
02 分子量差異
黃金法則：目的蛋白與內參分子量差＞5kDa，避免條帶重疊。例：目的蛋白 45kDa，別選 β-actin（42kDa），換 GAPDH（36kDa）或 β-tubulin（50kDa）。
進階技巧：用預染 Marker 定位，轉膜后剪膜分區域檢測，省時省力。若目的蛋白與內參分子量分子量接近，可選用4-20%梯度膠，提高分辨率。
03 亞細胞定位
04 實驗條件
代謝研究：缺氧、糖尿病模型慎用 GAPDH（其表達受糖酵解影響）。
細胞增殖：c-Jun 表達波動大，換用 PCNA 更穩定。
凋亡實驗：Lamin、TBP 易降解，優先選 Histone H3。
01 抗體類型與標記選擇
單克隆 vs 多克隆
單抗：特異性強，適合跨物種檢測。
多抗：親和力高但可能有非特異結合，適合保守蛋白。
標記類型
直接檢測：選 HRP 或熒光標記抗體。
分步檢測：用未標記抗體 + 二抗，適合多重檢測（需注意宿主種屬匹配）。
02 實驗條件優化
條帶異常
信號弱：提高抗體濃度（如從 1:1000 增至 1:500）或延長曝光時間。
雜帶多：降低抗體濃度或改用單抗。
省時技巧
分膜檢測：轉膜后按分子量剪膜，同時孵育目的蛋白和內參抗體。
一抗復用：用 Strip 緩沖液洗膜后，重新孵育另一抗體（如先測目的蛋白，再測內參）。
Q1: 為什么我的內參條帶總是不齊？
A：可能是上樣量不均或轉膜效率差異。建議：用 BCA 法精確定量，上樣前充分渦旋混勻。轉膜時用預染 Marker 監控，確保膜與膠緊密貼合。
Q2：如何避免抗體交叉反應？
A：選擇不同宿主來源的抗體（如兔抗目的蛋白 + 鼠抗內參），并用對應二抗檢測。
Q3: PTM研究如何選內參？
A：檢測磷酸化蛋白時，用未修飾的總蛋白（如 p38 總抗體）作為內參，而非通用內參。
“精準實驗，從選對抗體開始！”
內參抗體 = 物種匹配 + 分子量差＞5kDa + 亞細胞定位一致 + 實驗條件適配
無論是初入實驗室的科研新人，還是追求極致精準的資深學者，選擇經過嚴格驗證的內參抗體，都是實驗成功的基石。
萬生昊天內參抗體，專為高?？蒲袌鼍皟灮?/span>
高特異性：嚴格驗證，目標條帶清晰無雜帶。
廣適用性：覆蓋多種樣本（人類、小鼠、大鼠等）及實驗需求（WB、IF、IP等）。
嚴格質控：批間一致性高，穩定性優異，減少實驗變量。靈
活選擇：提供單克隆/多克隆抗體及不同宿主來源（兔、小鼠等），匹配不同實驗體系。